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发布：2020-07-05 05:09，更新：2010-01-01 00:00

生物发酵罐广泛用于抗1素、氨基酸、酶制剂、维生素、有机酸等好氧性发酵过程。在化工方面可用于气-液、气-液-固反应过程。在环保方面可用于污水处理。目前该设备在国内用于谷氨酸、黄原胶、糖化酶、柠檬酸生产，设备体积已达到140m3，投入使用后取得了非常显著的经济效益。兼性好氧微生物的生长不一定需要氧，但如果在培养中供给氧，则菌体生长更好，如酵母菌。发酵所必须的空气在静态混合元件内外上下流动，带动发酵液循环，促进气-液充分混合。

与机械搅拌式发酵罐相比节电70%-80%，降低成本。

无菌操作可靠性高，该设备没有动密封装置，无泄露，且设备内无死区，灭菌彻底，染杂菌的机会大幅度减少。

传热和传氧，可满足各种好氧性微生物在任何地区和季节里的发酵生产。

提高产率、转化率，设备机械剪切力对微生物的伤害小，加上溶氧充分、热量移走及时，为微生物提供了一个良好的生长环境，有效地促进了新陈代谢，加速产品积累，使产品的产率和转化率均有明显提高。

容易实现大型化和自动化，设备体积可从0.02m3到200m3，没有制造、安装、操作和维修困难。设备的控制因素比搅拌罐少，容易实现自动化控制。

本设备具有工作噪音小，装料系数高，基本不用维修等特点，设备投资比搅拌罐降低20%左右，另外，在不改变外形尺寸的情况下，可对原有机械搅拌罐进行改造。

溶氧量的控制

对溶解氧进行控制的目的是把溶解氧浓度值稳定控制在一定的期望值或范围内。在微生物发酵过程中,溶解氧浓度与其它过程参数的关系极为复杂,受到生物反应器中多种物理、化学和微生物因素的影响和制约。由于大规模生产单细胞蛋白的需要，又出现了压力循环和压力喷射型的发酵罐，它可以克服。从氧的传递速率方程也可看出，对DO值的控制主要集中在氧的溶解和传递两个方面。

（一）控制溶氧量。 (C*-CL)是氧溶解的推动力，控制溶氧量首要因素是控制氧分压（C*）。高密度培养往往采用通入纯氧的方式提高氧分压，而厌氧发酵则采用各种方式将氧分压控制在较低水平。如啤酒发酵，麦汁充氧和酵母接种阶段，一般要求氧含量达到8～10PPM；而啤酒发酵阶段，一般啤酒中的含氧量不得超过2PPM。发酵设备厂家说明抗1生1素发酵罐设计特点跟着制药职业的不断扩大出产，抗1生1素发酵罐日趋大型化。

此外，由于氧是难溶气体，一定温度和压力下，DO值有一上限。为此，向发酵液中加入氧载体是提高DO值的一个行之有效的方法。[3]因为氧气的存在会促使酵母采取有氧呼吸的代谢途径,从而破坏乙醇发酵的厌氧代谢过程。实验表明，在发酵基质中添加 5%正十二烷，可明显地提高发酵介质中的溶氧水平，改善供氧条件，维持溶氧的相对稳定，增加菌体浓度，提高L-天冬酞胺酶发酵水平(21%左右)

发酵罐液体制作的误区

发酵罐液体制作需要发酵罐本身质量过硬，又需要操作者具有扎实的食用菌基本功，更重要的是不能陷入发酵罐液体制作的几个误区。

误区一：接种量越大越好

很多人认为发酵罐的接种量越大越好，可是尝试过加大接种量却没有得到想要的效果，难道加大接种量让液体长得更快的想法不对吗？

关于发酵罐接种量应该这样说，在能保证纯度，和多次接种安全的情况下，可以加大接种量，即使如此，接种量也不是越大越好，根据菇行天下多年的经验，发酵罐的接种量不宜超过5%。

为什么呢？首先我们看大多数人加大接种量的手段，就是原来接种一个摇瓶，改为接种多个摇瓶，我们接种一个摇瓶，在不考虑摇瓶本身纯度的前提下，接种环节导致发酵罐染菌的几率为10%，那么，接种3个摇瓶的染菌几率就是30%，是原来一瓶的3倍。如果考虑摇瓶本身的纯度，染菌几率就是原来的6倍。2清洗发酵罐时，请用软毛刷进行刷洗，不要用硬器刮擦，以免损伤发酵罐表面。

很多人会采取合拼摇瓶的方法，就是将多个摇瓶在无菌条件下合拼在一个大三角瓶里，也叫做拼瓶，拼瓶是危险的，千万不要尝试！即使是在超净工作台里拼瓶，也很危险，更不要说在接种箱里了。因为：多个摇瓶的合拼就是多次接种的过程，一旦环境不合格或者操作不当，或者其中一个摇瓶带有杂菌，那么后果显而易见。挡板之宽度为发酵罐直径的10%~12%，挡板越宽则混合效果越好。

因此，不要试图通过加大接种量的方法解决发酵罐染菌的问题，你要做的是保证一瓶摇瓶的活性和纯度，还有一次发酵罐接种环节的绝1对安全，那么你就成功了50%。

误区二：通气量越大越好

很多人为了让发酵罐的菌球更小、更均匀，而提高了发酵罐的进气量，目的是通过提高进气压力，增强发酵罐内部的搅拌效果，已达到使菌球变小的目的。这样不仅不能让菌球变小，反而会增加染菌的几率。